Презентация на тему стерилизация отдельных инструментов. Презентация на тему "стерилизация"

Слайд 2

Термическая: паровая и воздушная(сухожаровая). Химическая: газовая или химическими растворами Радиационная стерилизация - применяется в промышленном варианте Метод мембранных фильтров - применяется для получения небольшого количества стерильных растворов, качество которых может резко ухудшиться при действии других методов стерилизации

Слайд 3

Методы стерилизации, разрешенные для применения в ЛПУ.

Слайд 4

Термическая стерилизация

Обжигание и кипячениеОбжигание в настоящее время для стерилизации инструментов не используется. Метод можно применять в домашних условиях при невозможности использования других. Обжигание металлических инструментов проводится открытым пламенем. Обычно на металлический поднос кладут инструмент, наливают небольшое количество этилового спирта и поджигают его. Кипячение долгое время было основным способом стерилизации инструментов, но в последнее время применяется редко, так как при этом методе достигается температура лишь в 100°С, что недостаточно для уничтожения спороносных бактерий. Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном виде) укладывают на сетку и погружают в дистиллированную воду (возможно добавление гидрокарбоната натрия - до 2% раствора). Обычное время стерилизации - 30 минут с момента закипания.

Слайд 5

Термическая стерилизация(паровой метод)

Для достижения температур выше точки кипения воды пользуются автоклавом. Автоклав представляет собой установку для стерилизации паром под давлением. Температура насыщенного пара зависит от давления. Режимы работы автоклава: 132 °C - 2 атмосферы(2 кгс/см2) - 20 минут - основной режим. Стерилизуют все изделия (стекло, металл, текстиль, КРОМЕ РЕЗИНОВЫХ). 120 °C - 1,1 атмосфера(1,1 кгс/см2) - 45 минут - щадящий режим. (стекло, металл, резиновые изделия, полимерные изделия - согласно паспорту, текстиль) 110 °C - 0,5 атмосферы(0,5 кгс/см2) - 180 мин - особо щадящий режим(нестойкие препараты, питательные среды) Компактный переносной автоклав

Слайд 6

Термическая стерилизация

Нередко удается достичь того же эффекта дробной стерилизацией в текучем паре при 100°С (тиндализация). Жидкость стерилизуется в этом случае при 100°С три дня подряд по 30 мин ежедневно; в промежутках между нагреваниями ее хранят в термостате, для того чтобы споры проросли, а затем вегетативные клетки были уничтожены при следующем нагревании. Для многих целей довольствуются частичной стерилизацией, т.е. уничтожением вегетативных форм микроорганизмов. Такого эффекта обычно достигают путем пастеризации - выдерживания в течение 5-10 мин при 75 или 80°С. Пастеризацией частично стерилизуют, в частности, молоко, вина. Применяют два метода пастеризации: кратковременное нагревание (20 с при 71,5-74°С) и сильное нагревание (2-5 с при 85-87°С).

Слайд 7

Термическая стерилизация(воздушный метод)

Сухой жар. Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах - сухо-жаровых шкафах-стерилизаторах. Стерилизация в сухожаровом шкафу происходит при помощи циркуляции внутри него горячего воздуха. При стерилизации сухим жаром бактериальные споры переносят более высокие температуры и притом дольше, чем при стерилизации влажным жаром. Поэтому жаростойкую стеклянную посуду, порошки, масла и т. п. стерилизуют в течение 1 часа при температуре 180°С. Стерилизация в автоклаве и сухожаровом шкафу в настоящее время является главным, наиболее надежным способом стерилизации хирургических инструментов, стеклянной посуды

Слайд 8

Термическая стерилизация(гласперленовый метод)

Принцип действия гласперленового стерилизатора основан на приведении стерилизуемых хирургических инструментов в контакт с маленькими стеклянными сферами, имеющими температуру 250С. Стерилизатор предназначен для быстрой стерилизации цельнометаллических, не имеющих полостей, каналов и замковых частей, стоматологических и других медицинских инструментов и приспособлений в среде нагретых до температуры 190-290ºС стеклянных шариков при полном погружении в них мелких изделий, а также рабочих частей более крупных изделий. Стерилизация инструмента производится в течение очень короткого времени - не более 20 секунд. Благодаря такому короткому периоду и неразрушающему воздействию стерилизационных (глассперленовых) шариков на инструмент, негативное влияние высокой температуры практически отсутствует. Всего за 5 секунд стерилизует: щипцы, клещи, скальпель-держатели, зонды, шпатели, долота, зубила, алмазы, файлы, боры, корневые элеваторы, расширители, угловые наконечники, иглодержатели, пинцеты, десневые ножницы и т.д.

Слайд 9

Термическая стерилизация(инфракрасный метод)

Слайд 10

Химическая стерилизация(газовый метод)

В мировой практике встречаются 3 основных метода низкотемпературной стерилизации: газовый этиленоксидный, газовый формальдегидный и плазменный. Газовая стерилизация осуществляется в специальных герметичных камерах. Стерилизующим агентом обычно являются: пары формалина (на дно камеры кладут таблетки формальдегида) или окись этилена. Инструменты, уложенные на сетку, считаются стерильными через 6-48 часов (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере). Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, в связи с чем способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

Слайд 11

При стерилизации пищевых продуктов, лекарственных препаратов и разного рода приборов, а также в лабораторной практике оправдало себя применение окиси этилена, которая убивает и вегетативные клетки, и споры, но действует только в том случае, если подвергаемые стерилизации материалы содержат некоторое количество (5-15%) воды. Окись этилена применяют в виде газовой смеси (с N2 или С02), в которой ее доля составляет от 2 до 50%. Этиленоксидный метод обеспечивает самый щадящий температурный режим стерилизации.

Слайд 12

Химическая стерилизация(плазменный метод)

Плазменный метод позволяет создать биоцидную среду на основе водного раствора пероксида водорода, а также низкотемпературной плазмы (ионизированный газ, образующийся при низком давлении). Это самый современный метод стерилизации, известный на сегодняшний день. Он позволяет стерилизовать любые медицинские изделия, от полых инструментов до кабелей, электроприборов,к которым в ряде случаев вообще не удается применить ни один из известных методов стерилизации. При этом методе после впрыскивания раствора перекиси водорода в стерилизационную камеру включается источник электромагнитного излучения частотой 13,56 Мгц, под воздействием которого одновременно происходит деление одной части молекул Н2О2 на две группы (ОН-), а другой части - на одну гидропероксильную группу (ООН-) и один атом водорода, сопровождающееся выделением видимого и ультрафиолетового излучения. В результате создается биоцидная среда, состоящая из молекул перекиси водорода, свободных радикалов и ультрафиолетового излучения.

Слайд 13

Плазма образуется под воздействием сильного электромагнитного излучения в атмосфере паров перекиси водорода. При отключении электромагнитного поля свободные радикалы преобразуются в молекулы воды и кислорода, не оставляя никаких токсичных отходов. Минимальное время обработки в плазменном стерилизаторе – от 35 минут, рабочая температура – 36-60°С. Одно из основных преимуществ этого метода – отсутствие токсичных отходов, образуются только кислород и водный пар. Плазменная стерилизация уничтожает все формы и виды микроорганизмов. Плазменные стерилизаторы – перспективное оборудование, но для большинства российских медицинских учреждений слишком дорогостоящее

Слайд 14

Химическая стерилизация(растворами антисептиков)

Стерилизация растворами химических антисептиков, также как лучевая и газовая стерилизация, относится к холодным способам стерилизации и не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем применяется для обработки прежде всего режущих хирургических инструментов. Для стерилизации в основном используют три раствора: тройной раствор, 96° этиловый спирт и 6% перекись водорода. В последнее время для холодной стерилизации оптических инструментов стали применять спиртовой раствор хлоргексидина, первомур и другие. Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде в один из указанных растворов. При замачивании в спирте и тройном растворе инструменты считаются стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода - через 6 часов. Данный метод представляет интерес для стерилизации растворов, содержащих лекарственные вещества, изменяющиеся при воздействии высокой температуры. В качестве антисептиков находят применение: фенол, трикрезол, хинозол, нипагин, нипазол, хлорэтон, меркурофен и цефирол. В литературе имеются также сообщения о применении для этой цели хлоркрезола, хлорбутола, фенилмеркурнитрата, соединений четвертичного аммония (бензалконий, цетримид) и некоторых других веществ.

Слайд 15

Карболовая кислота входит в тройной раствор (раствор Крупенина). Им стерилизуют режущие инструменты и предметы из пластмасс. В нем хранятся простерилизованные иглы, скальпели, корнцанги, полиэтиленовые трубки. Лизол с зеленым мылом используется для помывки стен, полов, мебели операционно-перевязочного блока, а также для обработки инструментов, резиновых перчаток, предметов, загрязненных гноем или калом во время операции. Сулема (дихлорид ртути) 1: 1000, 1: 3000 Стерилизуются перчатки, дренажи и другие предметы. Оксицианид ртути 1: 10000 применяется для стерилизации мочеточниковых катетеров, цистоскопов и других инструментов с оптикой. Диоцид - препарат ртути, сочетает в себе антисептические и моющие свойства. Некоторые используют для обработки рук хирурга - руки моют в тазу раствором 1: 3000, 1: 5000 - 6 мин. Этиловый спирт применяется для стерилизации режущих инструментов, резиновых и полиэтиленовых трубок, 96%-м спиртом дубят руки хирурги перед операцией. Хотя 70%-й спирт бактерициднее 96%-го, однако спорообразная инфекция не погибает длительное время. Возбудители газовой гангрены и споры сибирской язвы могут сохраняться в спирте в течение нескольких месяцев. Для увеличения бактерицидности спиртовых растворов к ним добавляются тимол (1: 1000), 1%-й раствор бриллиантового зеленого (раствор Баккала), формалин и др.

Слайд 16

Давно используются бактерицидные свойства галогенов. Н. И. Пирогов применял йод спиртовый 2%-й, 5%-й и 10%-й, еще не зная о существовании микроорганизмов. Йод обладает бактерицидным и спороцидным эффектом. Он и ныне не утратил своего значения. Однако чаще используют его комплексные соединения с поверхностью - активными веществами, так называемыми. йодофорами, к которым относятся йодонат, йодопиродон, йодолан и др. Они чаще применяются для обработки рук хирурга и операционного поля. Соединения хлора издавна используются для дезинфекции (хлорная известь) и стерилизация (гипохлорид натрия, хлорамин и др.). Бактерицидность этих препаратов зависит от содержания в них активного хлора. В хлорамине активного хлора 28-29 %, а дихлоризоциануровой кислоте - 70-80 %, гипохлориде натрия - 9,5 %. Перекись водорода (33 % перекись водорода - пергидроль) в 3 % и 6 % концентрации используется для стерилизации и дезинфекции Она безвредна для человека. Смесь перекиси водорода с муравьиной кислотой, предложенная И. Д. Житнюком и П. А. Мелехоым в 1970 г., была названа первомуром. В процессе приготовления С-4 образуется надмуравьиная кислота - она и является действующим началом. Используется для обработки рук хирурга или стерилизации инструментов В Чехословакии предложили перстерил для стерилизации резиновых и полиэтиленовых трубок. В России выпущен бета-пропиолактон. В концентрации 1: 1000 синегнойная палочка в 2%-м растворе погибает в течение 10 мин. Его добавляют в количестве 0,2% в готовые питательные среды, которые затем инкубируют 2 ч при 37°С. Если оставить среду на ночь, пропиолактон полностью разложится.

Слайд 17

Стерилизация ионизирующим излучением

Антимикробная обработка может быть осуществлена с помощью ионизирующего излучения (у-лучи), ультрафиолетовых лучей и ультразвука. Наибольшее применение в наше время получила стерилизация у-лучами. Радиационный метод или лучевую стерилизацию γ-лучами, применяют в специальных установках при промышленной стерилизации однократного применения- полимерных шприцев, систем переливания крови, чашек Петри, пипеток и др.хрупких и термолабильных изделий. Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации должна быть весьма значительной - до 20-25 мкГр, что требует соблюдения особо строгих мер безопасности. В связи с этим лучевая стерилизация проводится в специальных помещениях и является заводским методом стерилизации (непосредственно в стационарах она не производится). Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет. Герметичная упаковка делает удобными хранение и использование инструментов (необходимо просто вскрыть упаковку). Метод выгоден для стерилизации несложных одноразовых инструментов (шприцы, шовный материал, катетеры, зонды, системы для переливания крови, перчатки и пр.) и получает все более широкое распространение. Во многом это объясняется тем, что при лучевой стерилизации нисколько не теряются свойства стерилизуемых объектов.

Слайд 18

Стерилизация ультрафиолетовым излучением

Источники УФ-излучения (длина волны 260 нм) - ртутные кварцевые лампы. Их мощное бактериостатическое действие основано на совпадении спектра испускания лампы и спектра поглощения ДНК микроорганизмов, что может является причиной их гибели при длительной обработке излучением кварцевых ламп, при недостаточно мощном действии УФ в прокариотической клетке активизируются процессы световой и темновой репарации, то есть клетка восстанавливается. Метод применяется для стерилизации помещений, оборудования в биксах, а также для стерилизации дистиллированной воды.

Слайд 19

Эффективный стерилизатор позволяющий стерилизовать хирургические инструменты и перевязочные материалы сухим теплом и ультрафиолетовыми лучами. Имеет мощное бактерицидное действие. Рециркулятор предназначен для обеззараживания воздуха помещений в присутствии и отсутствии людей в процессе принудительной циркуляции воздушного потока через корпус, внутри которого размещены две бактерицидные лампы низкого давления. Бактерицидная камера для хранения стерильных медицинских изделий

Слайд 20

Метод состоит в отделении микробов от жидкости с помощью стерильных микропористых фильтров Механизм фильтрации объясняется главным образом адсорбцией микробов, происходящей в порах фильтрующих материалов, которые в большинстве случаев заряжены отрицательно. В качестве микропористого фильтрующего материала используют каолин, фарфор, бумажно-асбестовую массу, инфузорную землю, коллодий и другие пористые материалы, а также стекло.

Слайд 21

Механический метод стерилизации. Бактериальная фильтрация

Механический метод стерилизации с помощью микропористых фильтров имеет некоторые преимущества по сравнению с методами тепловой стерилизации, когда раствор подвергается воздействию высокой температуры. Для многих растворов термолабильных веществ он по существу является вообще единственным доступным методом стерилизации. Широкое применение находят микропористые фильтры на химико-фармацевтических заводах и при производстве вакцин и сывороток. Бактериальные фильтры

Посмотреть все слайды

План Введение Методы стерилизации, разрешенные для применения в ЛПУ Этапы стерилизации a)Дезинфекция b)Предстерилизационная обработка c)Стерилизация Изделия, подлежащие стерилизации Методы дезинфекции a)Кипячение b)Паровой c)Воздушный d)Химический Предстерилизационная обработка a) Алгоритм действий Виды и способы стерилизации 1)Химический метод стерилизации 2)Паровой метод стерилизации 3)Воздушный метод стерилизации Методы контроля стерилизации Контроль ПО осуществляется с помощью следующих проб Список литературы

Введение Одним из важнейших направлений работы всего мед персонала является обеспечение и контроль за выполнением санитарно- гигиенических и противоэпидемических мероприятий и требовании, предусмотренных соответствующими приказами МЗ РК. Стерилизация – это процесс уничтожения всех видов микроорганизмов, а также спор и бактерий.

Методы стерилизации, разрешенные для применения в ЛПУ Физический (термический)Паровой-Водяной насыщенный пар под избыточным давлением Воздушный-Сухой горячий воздух Инфракрасный-Инфракрасное излучение Гласперленовый-Среда нагретых стеклянных шариков Химический, Газовый -Окись этилена или ее смесь с другими компонентами Плазменный -Пары перекиси водорода в сочетании с их низкотемпературной плазмой Жидкостный -Растворы химических средств (альдегид-, кислород- и хлорсодержащие)

Этапы стерилизации 1)Дезинфекция-это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение возбудителей инфекционных заболеваний и разрушение токсинов на объектах внешней среды. Дезинфекция уменьшает количество микроорганизмов до приемлемого уровня, но полностью может их и не уничтожить. 2)Предстерилизационная обработка-это очистка медицинских изделий перед их стерилизацией, с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. 3)Стерилизация-это полное уничтожение всех форм микробов и их спор под воздействием высоких температур и других физических факторов, химических веществ, ионизирующего излучения.

Изделия, подлежащие стерилизации 1)Дезинфекции подлежит медицинский и лабораторный инструментарий всех видов после каждого использования. 2)Стерилизации подвергаются все медицинские изделия, соприкасающиеся с кожными и слизистыми покровами, органами, раневыми поверхностями, контактирующие с кровью и другими биологическими жидкостями. 3)Инструментарий одноразового использования (шприц, системы, скарификаторы, шпателя, гинекологические зеркала) подвергается утилизации путем сжигания в специальных или муфельных печах при температуре не менее 6000 С

Методы дезинфекции 1)Кипячение Применяется: для изделий из стекла, металла, термостойких полимерных материалов, резины. 2)Паровой Применяется: для изделий из стекла, металла, термостойких полимерных материалов, резины, латекса. Примечание: При дезинфекции кипячением и паровым методом изделия из полимерных материалов должны быть упакованы в марлю 3)Воздушный Применяется: для изделий из стекла и металла. 4)Химический Применяется: для изделий из стекла, коррозионостойких металлов, термостойких полимерных материалов, резины. Примечание: После дезинфекции химическим способом, изделия должны быть промыты в проточной воде до полного удаления запаха дезинфицирующего средства.

Предстерилизационная обработка Алгоритм действий: 1)По завершению дезинфекции медицинские инструменты ополаскиваются проточной водой 30 секунд. Затем замачиваются при полном погружении в раствор моющего средства температуры 20 -250 С на 15 минут. 2)Мытье каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона 30 секунд. 3)Ополаскивание проточной водой 10 минут. 4)Ополаскивание дистиллированной водой 30 секунд 5)Сушка горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 850 С до полного исчезновения влаги.

Виды и способы стерилизации 1)Химический метод стерилизации Данный метод рекомендуется для изделий из полимерных материалов, резины, стекла, коррозийностойких металлов. Проводится при полном погружении изделия в раствор, после чего изделие промывается стерильной водой. Срок хранения стерильного изделия в стерильной емкости, выложенной стерильной простыней – 3 суток. Для погружения изделий в дез. раствор должны использоваться емкости из стекла, пластмассы или покрытые эмалью 1) 6% раствор перекиси водорода t= Не менее 18 0 С в течении 360 мин 2) 10% раствор гигасепта в течении 300 мин 3) 2, 5% раствор лизоформина-3000 t= 40 -50 0 С в течении 60 мин 4) Сайдекс активированный 2% раствор глутарового альдегида с p. H=8, 2 -9, 2 t= 20 -25 0 С в течении 240 мин 5) Глутаровый альдегид 2, 5% p. H=7, 0 -8, 5 t= Не менее 20 0 С в течении 360 мин

2)Паровой метод стерилизации Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках без фильтров или в стерилизационных коробках с фильтром или в двойной мягкой упаковке из бязи или пергамента, бумаги мешочной, непропитанной бумаги мешочной влагопрочной, бумаги для упаковки продуктов на автоматах марки Е, бумаги крепированной в паровом стерилизаторе. Срок хранения изделий, простерилизованных в коробках с фильтром – 20 суток, в остальной упаковке – 3 суток Режим стерилизации Давле ние пара, кг/см 2 0, 11 Рабоча я темпер атура, 0 С 132 120 Время выдер жки, мин Применяемость 20 Рекомендуется для изделий из коррозийностойких металлов, стекла, изделий из резины 45 Рекомендуется для изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов (полиэтилен высокой плотности, ПВХ

3)Воздушный метод стерилизации Стерилизации подвергают сухие изделия, и ее проводят в упаковке из бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной, бумаги для упаковки продуктов на автоматах марки Е, бумаги упаковочной высокопрочной, бумаги крепированной, бумаги двухслойной крепированной или без упаковки в открытой емкости в воздушном стерилизаторе Изделия простерилизованные без упаковки используются непосредственно после стерилизации, в упакованном виде – в течение 3 суток. Режим стерилизации Применяемость Рабочая температура, 0 С Время выдержки, мин 180 60 150 Рекомендуется для изделий из металлов, стекла и силиконовой резины

Методы контроля стерилизации 1)Физические и xимические Bедется контроль параметров режима работы стерилизаторов химические методы основаны на изменении цвета индикаторов по достижении определенной температуры 2)Бактериологические Bедется oценка эффективности стерилизации

Контроль ПО осуществляется с помощью следующих проб: 1) Азопирамовая проба проводится на наличие гемоглобина, окислителей, хлорсодержащих веществ, стирального порошка, ржавчины. Готовят 1, 0 -1, 5%-ный раствор солянокислого анилина в 95%-ном спирте. Его хранят в холодильнике до 2 месяцев, вне его - не более месяца. Перед постановкой пробы смешивают равные объемы азопирама и 3 %-ной перекиси водорода. Смесь использовать в течение 1 -2 часов. Не проверять горячие инструменты, не держать раствор возле нагревательных приборов и на ярком свете. При попадании реактивана кровяное пятно в течение одной минуты появляется фиолетовое окрашивание.

2) Амидопириновая проба проводится на наличие крови. Смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 505 уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода(по 2 -3 мл). Наносят на контролируемое изделие 2 -3 капли реактива. При наличии загрязнения кровью появляется сине –зеленое окрашивание (экспозиция 3 минут 3)Фенолфталеиновая проба проводится на проверку качества отмывания с поверхности инструмента активных веществ моющего инструмента. Наносят 1% раствор фенолфталеина. При их наличии возникает розовое окрашивание.

Список литературы 1)Сан. Пи. Н № 8. 013. 03 от 31. 01. 2003 «Санитарноэпидемиологические требования к качеству стерилизации и дезинфекции изделий медицинского назначения» 2)http: //ru. wikipedia. org

ДЕЗИНФЕКЦИЯ И
СТЕРИЛИЗАЦИЯ

Глоссарий:
Дезинсекция -уничтожение
насекомых – переносчиков
инфекционных заболеваний
Инсектициды –препараты для
уничтожения насекомых
Дератизация – уничтожение
грызунов - переносчиков
инфекционных заболеваний

Дезинфекция -

Дезинфекция
1.
2.
это уничтожение патогенных и условнопатогенных микроорганизмов вегетирующих
форм в окружающей человека среде.
Основная задача – прерывание механизма
передачи инфекции методом обеззараживания
различных объектов.
Цель:
Уничтожение возбудителей инфекционных
заболеваний на объектах внешней среды.
Защита персонала, обрабатывающего
медицинский инструментарий и аппаратуру, от
возможного инфицирования

Виды дезинфекции

-Профилактическая – осуществляется с целью
предупреждения ВБИ, независимо от наличия
инфекции. Дезинфицируются питьевые и сточные
воды, посуда, помещения, предметы.
Результативна при непрерывном проведении.
-Очаговая –текущая – в очаге инфекции, у постели
больного, многократная, препятствует
распространению возбудителя на окружающих.
-Заключительная – однократно после ухода
больного (инф. отд., выписка) для полного
уничтожения возбудителя в очаге инфекции.

Режимы дезинфекции, ПСО и
стерилизации
регламентируются приказом
ОСТ-42-21-2-85 –
«Стерилизация и
дезинфекция изделий
медицинского назначения»

Методы дезинфекции

механические,
физические,
химические
комбинированные

Классификация предметов по категориям риска переноса ВБИ
Некритические –
контактирующие со
здоровой кожей и
предметы
окружающей среды
не контактирующие с
пациентом: трости,
костыли, тонометр,
термометр, стены,
каталки, мебель.
Очистка и
дезинфекция низкого
уровня. (1% р-р
хлорамина,
двукратное
протирание или
замачивание на 15м)

Полукритические –
контактирующие с
биологическими
жидкостями, со
слизистыми оболочками и
поврежденной кожей:
дыхательное и
анастезиологическое
оборудование, эндоскопы,
судна, ректальные и
вагинальные инструменты
Очистка и дезинфекция
среднего или высокого
уровня (3% р-р
хлорамина на 60 мин),
ПСО, стерилизация.

Критические –
Очистка,
проникающие в
дезинфекция,
полости тела
ПСО,стерилизация.
,стерильные ткани и
сосуды: хирургические
инструменты,
имплантанты, иглы,
сосудистые и мочевые
катетеры,
внутриматочные
средства

Механические методы

вытряхивание,
выколачивание,
обработка пылесосом,
стирка и мытье,
проветривание и вентиляция
помещений,
фильтрацию воды,
подметание.

Физические методы

сжигание,
прокаливание,
обжигание,
кипячение,
пастеризация,
тиндализация (дробная пастеризация),
солнечный свет,
радиоактивное излучение,
УФ-излучение,
токи ультравысокой частоты,
Радиоактивное излучение
Замораживание

Химические методы

-орошение
-протирание
-полное погружение
-засыпание

Химические группы дезинфектантов:

Галоидсодержащие
Кислородсодержащие
ПАВ (ЧАС)
Гуанидины
Альдегиды
Спирты
ФенолыНазвание средства
Концентрация,
экспозиция
Особенности
применения
1. Хлорная известь
Сухая-200 г на 1 л, 60 мин
Грубая дезинфекция
выделений больного
10%
2. Хлорамин
Маточный раствор
3%-60 мин
Мусор, гнойный
перевязочный материал
1%
Полы, поверхности,
судна, ванны
0,5%
Посуда, поверхности
0,5%-30 мин, 1%-15 мин
3%-60 мин
Термометры
Полукритичные и

Гипохлориты Ca, Na
0,5%
Как хлорная известь
Жавель
1-2 таб. на 10 л. Воды Помещения,
15-60 мин.
сантехника, мебель,
белье
Нейтральный анолит
0,03-0,05%- 60 мин.
Дезинфекция ИМН,
ПСО, стерилизация
Пресепт (табл.)
0,5г, 2,5г, 5,0г
Твердый
поверхности,
биологические
жидкости
0,056%-90 мин.
Гепатит 2т на 5л
0,28%- 45 мин.
Туберкулез 10т на 5л.

Кислородсодержащие:

6% перекись
водорода
Виркон
Чистая-60 мин.
Изделия
загрязненные
кровью,
генеральная уборка,
стерилизация
С добавлением 5г
«СМС»
2% 10-30 мин.
ПСО
Дезинфекция ИМН

Дезинфекция изделий медицинского назначения:

Термометры ртутные, медицинские
-1% р-ра хлорамина- 15 минут. При полном погружении, затем
промыть водой, хранить в сухом виде.
Шпатель металлический
-Кипячение в дистиллированной воде -30 минут или обработка
сухим воздухом при температуре 120 градусов С – 45 минут.
Кушетки
-Кушетка полностью покрыта клеенкой.
1% р-ра хлорамина, двукратное протирание или 3% р-ра
хлорамина, двукратное протирание, если загрязнена кровью и
ее компонентами или другими биологическими жидкостями.
Ножницы
-Кипячение в дистиллированной воде – 30 минут или в 2%
содовом растворе -15 минут. При полном погружении.
Мочалки для мытья пациентов.
-Кипячение в дистиллированной воде- 30 минут.

Техника безопасности при работе с дезсредствами

Допускаются лица старше 18 лет, прошедшие
инструктаж.
Не допускаются лица с повышенной
чувствительностью к химическим веществам.
Специально оборудованные помещения для
приготовления растворов, спецодежда.
Хранение в спецпомещениях, плотно
закрытыми, в темной стеклянной посуде.
Этикетки с названиями, %, дата изготовления.
Осуществлять уход за кожей рук.

Первая помощь при попадании дезсредств на кожу и слизистые

При попадании на кожу немедленно смыть водой.
При попадании в глаза промыть в течении 10-15 минут
проточной водой, при необходимости закапать
альбуцид 30%, если боль, резь – капли с новокаином
2%.
При раздражении дыхательных путей – выйти в другое
помещение или на воздух, прополоскать рот и
носоглотку водой или 2% р-ром соды, выпить теплое
молоко с содой, при необходимости назначают
сердечные, успокаивающие и противокашлевые
средства.
При попадании дезсредства в желудок:
Измельчить 10-20 таблеток активированного угля,
принять и запить несколькими стаканами воды. При
необходимости обратиться к врачу

Предстерилизационная очистка

Цель предстерилизационной обработки -
удаление с изделий медицинского
назначения белковых, жировых, лекарственных,
механических загрязнений, в том числе
невидимых (крови, слизи), дезинфицирующих
средств, детергентов, что обеспечивает
эффективность последующей стерилизации и
безопасное использование
простерилизованных изделий.

Этапы ПСО

1 этап - промывание после дезинфекции
проточной водой над раковиной в течение 30 с до
полного удаления запаха дезинфицирующего
средства;
2 этап - замачивание (полное погружение)
изделия в одном из моющих растворов - 15 мин:
≪Биолот≫ 0,5% - температура 40°С;
перекись водорода 0,5% с добавлением 0,5%
одного из синтетических моющих средств (CMC):
≪Прогресс≫, ≪Лотос≫, ≪Лотос-автомат≫,
≪Айна≫, ≪Астра≫ - температура 50°С.

3 этап - мытье каждого изделия в том же
растворе, в котором оно замачивалось,
с помощью ерша или ватно-марлевого тампона в
течение 30 с;
4 этап - ополаскивание проточной водой после
использования ≪Биолота≫ в течение
3 мин, растворов перекиси водорода в CMC
≪Прогресс≫, ≪Маричка≫ - 5 мин; CMC
≪Астра≫, ≪Лотос≫, ≪Лотос-автомат≫ -10 мин;
5 этап -ополаскивание дистиллированной водой
в течение 30 с;
6 этап -сушка горячим воздухом при
температуре 75-87°С в сушильных шкафах.

Контроль качества ПСО

Азопирамовая проба. Готовят раствор:
солянокислого анилина 1,0 – 1,5 гр
амидопирина 100 ,0 гр
Долить до 1 л 95-% этилового спирта.
Храниться в плотно закрытом флаконе при 4"С (в
холодильнике) 2 месяца, а в темноте при комнатной
температуре (18-23°С) - не более 1 месяца.
Непосредственно перед пробой готовят раствор:
смешивают в равных количествах
азопирам и 3-процентную перекись водорода.

Амидопириновая проба. Готовят спиртовой 5процентный раствор амидопирина
в 95-процентном этиловом спирте, который
может храниться во флаконах с притертой
пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.
30-процентный раствор уксусной кислоты и 3процентной перекиси водорода
готовят на дистиллированной воде. Смешивают
равные количества 5-процентного
спиртового раствора амидопирина, 30процентной уксусной кислоты и 3-процентной
перекиси водорода перед употреблением.

Стерилизация

метод, обеспечивающий гибель в
стерилизуемом материале
вегетативных
и споровых форм патогенных и
непатогенных микроорганизмов.

Методы стерилизации

термические: паровой, воздушный;
химические: газовый, химические
препараты;
радиационный,
плазменный и озоновый (группа
химических средств).

Паровой метод

- 2 атм- 132 С – 20 минут – для
коррозийно-стойкого металла, стекла
,текстиля.
-1,1 атм – 120 С – 45 минут – изделия
из резины, латекса, полимеров

ьтатам поиска

Воздушный метод

180°С - 60 мин;
160°С - 150 мин.

Газовый метод

Газ обладает стерилизующим действием при нормальной
температуре, при данном методе стерилизации могут
быть использованы:
- окись этилена с бромистым этилом
Этим методом стерилизуют: оптика, кардиостимуляторы,
полимерные материалы (резина, пластмасса, стекло,
металл; время экспозиции - 6 часов, t в камере - 35*С)
- пары 40% раствора формальдегида в этиловом спирте.
Этим методом стерилизуют: эндоскопические
инструменты, аппараты искусственного кровообращения,
изделий из пластмасс и кетгута; время экспозиции: для
пластмасс и резины - 180 мин.; для стекла и металла - 120
мин.; t - 80*С, доза формальдегида - 150 мл на 1 л
(должен распыляться).

Химическими препаратами

- 6% перекись водорода: 6 часов - при
комнатной t; 3 часа - при однократном
подогреве (50 *С);
- первомур С4: для шовного материала - 4,8%,
экспозиция 15 мин.;
- сайдекс: изделия из металла - 4 часа; изделий
из полимерных материалов, эндоскопы - 10
часов; отмывка инструментов после
стерилизации:

Радиационный

Стерилизующим агентом являются
ионизирующие у (гамма)- и β (бета)излучения
Сохраняется стерильность в такой
упаковке годами

Стерильность материалов, изделий, сроки сохранения:

закрытые биксы нового образца - 20 суток;
Закрытые биксы без фильтра
- 3 суток
при открытом биксе любого образца
стерильность материалов, изделий
сохраняется до 24 часов;
крафт-пакеты, заклеенные - 20 суток;
крафт пакеты на скрепках - 3 суток.

Правила укладки бикса

обработать внутреннюю поверхность бикса 70% спиртом и на его дно
положить простыню с таким расчетом, чтобы затем ее концами накрыть
содержимое бикса;
заложить в бикс наборы резиновых изделий, перевязочного материала,
белья;
инструменты завернуть в полотенце или пеленку и заложить в бикс;
после загрузки бикса разместить в нем 5 индикаторов: 4 - по внутренней
стороне стенок бикса и 1 - в центре бикса (непрямой метод контроля
стерильности);
на крышке бикса зафиксировать бирку, на которой отметить: вид
материала и лечебное отделение, для которого производится
стерилизация инструментов и материалов;
крышку бикса герметично закрыть. У бикса старого образца сдвинуть
металлическую ленту-пояс и тем самым открыть окна на его стенках,
которые после завершения стерилизации необходимо закрывать;
после стерилизации на бирке бикса поставить дату и подпись
медицинской сестры, проводящей автоклавирование.
Возможны различные варианты комплектации биксов: только один вид
материала, наборы для типичного или конкретного оперативного
вмешательства.

Контроль качества стерилизации

Технический метод – термометры в камерах,
манометры.
Бактериологический метод контроля проводят с
помощью биотеста - объекта из определенного
материала, обсемененного тестмикроорганизмами.
Термический Для оперативного контроля ранее
рекомендовали многочисленные химические
вещества, точка плавления которых соответствует
температуре стерилизации.
-мочевина (132)
-тиомочевина (180) , янтарная кислота (180-192)

Заключительный контроль знаний:
1. Основная задача дезинфекции
2. Виды дезинфекции
3. Методы дезинфекции
4. Химические методы дезинфекции
5. Этапы ПСО
6. Что такое стерилизация
7. Методы стерилизации
8. Параметры стерилизации изделий из
резины паровым способом
9. Препараты используемые при химической
стерилизации
10. Температура плавления тиомочевины Презентацию подготовила:
студентка.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ

– метод, обеспечивающий гибель в стерилизуемом материале
вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных
микроорганизмов.
Стерилизации должны подвергаться
все предметы или отдельные виды
диагностической аппаратуры,
соприкасающиеся с раной, кровью,
инъекционными препаратами, с
слизистыми оболочками.

Методы стерилизации.

Термическая: паровая и воздушная (сухожаровая)
Химическая: газовая или химическими растворами (стерилянтами)
Плазменная (плазмой перекиси водорода)
Радиационная стерилизация - применяется в промышленном варианте
Метод мембранных фильтров - применяется для получения небольшого
количества стерильных растворов, качество которых может резко
ухудшиться при действии других методов стерилизации(бактериофаг,
селективные питательные среды, антибиотики)

Методы стерилизации, разрешенные для применения в ЛПУ.

Тип метода
Метод
Физический
Паровой
(термический)
Химический
Стерилизующий агент
Водяной насыщенный пар под
избыточным давлением
Воздушный
Сухой горячий воздух
Инфракрасный
Инфракрасное излучение
Гласперленовый
Среда нагретых стеклянных
шариков
Газовый
Окись этилена или ее смесь с
другими компонентами
Плазменный
Пары перекиси водорода в
сочетании с их
низкотемпературной плазмой
Жидкостный
Растворы химических средств
(альдегид-, кислород- и
хлорсодержащие)

Паровая стерилизация

существляется подачей насыщенного водяного пара под давлением в паровых стерилизаторах
(автоклавах).
аровая стерилизация под давлением считается наиболее эффективным методом, так как чем
выше давление, тем выше температура пара, стерилизующего материал; бактерицидные
свойства пара выше, чем воздуха, поэтому для стерилизации применяют пересыщенный пар.
аровой стерилизации подвергают изделия из текстиля (бельё, вату, бинты, шовный
материал), из резины, стекла, некоторых полимерных материалов, питательные среды,
лекарственные препараты.

Режимы паровой стерилизации:

132 °C - 2
атмосферы(2
кгс/см2) - 20 минут
- основной режим.
Стерилизуют все
изделия (стекло,
металл, текстиль,
кроме резиновых).
120 °C - 1,1
атмосфера(1,1
кгс/см2) - 45 минут
- щадящий режим
(стекло, металл,
резиновые изделия,
полимерные изделия
- согласно
паспорту, текстиль)

Упаковочные материалы при паровой стерилизации:

Стерилизационная коробка (бикс) простая. Срок хранения
3 суток после стерилизации.
Стерилизационная коробка (бикс) с фильтром. Срок
хранения 20 суток после стерилизации.
Крафт-пакеты со скрепками. Срок хранения - трое
суток после стерилизации.
Крафт-пакеты заклеивающиеся. Срок хранения - 20
суток после стерилизации.
Ткань (бязь - КРОМЕ МАРЛИ). Срок хранения - трое
суток после стерилизации.
Комбинированные упаковки (прозрачная синтетическая
плёнка + бумага)(дгм стеригард). Срок хранения от 180
суток до 720 суток.

Биксы

КС
КФ

Медицинские крафт пакеты для стерилизации

Существуют различные способы удаления воздуха из паровой камеры, из
которых в современных медицинских стерилизаторах применяются два:
гравитационный;
форвакуумный.
Гравитационный способ удаления воздуха - это когда
через продувочный клапан в нижней части
стерилизатора удаляется воздух, более тяжелый по
сравнению с паром, который поступает через клапан
в верхней части камеры. Пар постепенно заполняет
камеру, замещая воздух.
В форвакуумных стерилизаторах удаление воздуха
осуществляется многократной циклической откачкой
воздуха из стерилизационной камеры. В камеру
подается насыщенный пар и производится откачка
смеси пара и воздуха, такой цикл удаления
повторяется многократно от 3 до 9 раз (в зависимости
от марки аппарата) до полного удаления воздуха из
камеры, пористой загрузки и изделий с пустотами.
Откачка паро-воздушную смесь проводят либо
форвакуумным насосом, либо инжектором.

Воздушная стерилизация

Д
ля этого метода используют сухожаровые
шкафы. Стерилизующий агент – сухой
горячий воздух
У
паковки: крафт-пакеты, бязь.
М
атериалы: металл, текстильные изделия.
Д
остоинства: дешевый, простой метод, не
вызывает коррозии металла, не происходит
увлажнения упаковки и изделий.
Н
едостатки: ограниченный выбор упаковки,
медленное и неравномерное прогревание
изделий, необходимость использования более
высоких температур, невозможность
использовать материалы из резины,
полимеров.

Режим работы: при температуре 180°С в течение 60 мин
Срок стерильности: В открытом виде используются немедленно
или перекладываются на стерильный стол и
сохраняются 6 часов
Упакованные в пакеты, скрепленные
металлическими скрепками- 3 суток,
заклеенные специальным клеем- 20 суток

Гласперленовые стерилизаторы

Гласперленовый метод предназначен для быстрой стерилизации
небольших цельнометаллических инструментов, не имеющих
полостей, каналов и замковых частей.
Этот метод используется, в основном, стоматологами для
экспресс-стерилизации мелких инструментов - боров,
пульпоэкстракторов, корневых игл, алмазных головок и др., а
также рабочих частей более крупных - зондов, гладилок,
экскаваторов, шпателей и т. д. Так же можно стерилизовать
акупунктурные иглы.
Преимущества метода - короткое время стерилизации
и отсутствие расходных материалов.

Метод крайне прост - инструмент
погружается в среду мелких
стеклянных шариков, нагретых до
температуры 190 - 2900С (таким
образом, чтобы над рабочей
поверхностью инструмента
оставался слой шариков не менее
10 мм) на 20 - 180 секунд, в
зависимости от размера и массы
инструмента.
Всего за 5 секунд стерилизует:
щипцы, клещи, скальпельдержатели, зонды, шпатели,
долота, зубила, алмазы, файлы,
боры, корневые элеваторы,
расширители, угловые
наконечники, иглодержатели,
пинцеты и т.д.

Химическая стерилизация

Осуществляется в стерильных условиях. Помещение для
стерилизации должно быть оснащено вытяжным шкафом,
бактерицидным облучателем. Медсестра работает в стерильной
спецодежде, перчатках, респираторе.
стерильную емкость со стерилизантом погружаются изделия
медицинского назначения, прошедшие дезобработку и ПСО,
плотно закрывают крышку. В журнале отмечается время начала
стерилизации. По окончании стерилизации мед. изделия
извлекаются из раствора стерильными
пинцетами или корнцангами,
перекладываются в другую стерильную
емкость со стерильной водой,
промываются, просушиваются и
выкладываются в бикс со стерильной
пеленкой. Время окончания стерилизации
также заносится в журнал стерилизации.

Используются следующие стерилизующие агенты и режимы:

6% р-р перекиси водорода при температуре + 50°С - 3 часа; при температуре + 18°С - 6 часов. Раствор
перекиси водорода может быть использован в течение 7 суток со дня приготовления при условии его
хранения в закрытой емкости в темном месте. При большем сроке хранения использование раствора может
осуществляться только после контроля содержания активнодействующих веществ. Температура раствора в
процессе стерилизации не поддерживается.
Препарат "Сайдекс" (глутаровый альдегид) при комнатной температуре - 10 часов. Работа с препаратом
должна проводиться в хорошо проветриваемом помещении. Обладает довольно сильным неприятным
запахом. Может вызывать аллергические реакции у персонала.
Препарат «Сайдекс NU» (надуксусная кислота) при комнатной температуре – 10 мин. Оптимальный на
сегодняшний день препарат для экстренной стерилизации. Не обладает недостатками обычного «Сайдекса».
Дорогостоящий.
Ранее использовался 1% раствор отечественного препарата более + 18°С. Время стерилизации 45 минут. В
последние "Дезоксон-1" (надуксусная кислота) при температуре не годы не производится, в связи с чем
вышел из употребления.
Существенным недостатком химической стерилизации хирургических инструментов является необходимость
тщательного отмывания их от стерилизующего раствора перед использованием. 6% перекись водорода
вызывает ожоги даже на неповрежденной коже. «Сайдекс» вызывает некрозы. Первомур – гемолиз.
Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных химическим методом и находящихся в
стерилизационной коробке, выложенной стерильной простыней - 3 суток.
Хранить стерильные изделия в 70° этиловом спирте или спиртовом растворе хлоргексидина (как это
делалось ранее) нельзя, т.к. он не оказывает стерилизующего действия, и в нем могут выжить устойчивые
формы микроорганизмов (споры), что может привести к вторичному обсеменению ранее простерилизованных
изделий.

Газовая стерилизация

Для этого метода используют газовые
стерилизаторы.
Стерилизующий агент – формальдегид или
этилен-оксид.
Упаковки: бумага-ламинат, пергамент,
крафт-бумага.
Материалы: полимеры, стекло, металл.
Достоинства: невысокая температура,
использование любых материалов.
Недостатки: токсичность для персонала и
взрывоопасность при несоблюдении
техники безопасности, продолжительный
цикл стерилизации.

Радиационный метод стерилизации

необходим для стерилизации изделий из термолабильных
материалов.
– основной метод промышленной стерилизации. Используется
предприятиями, выпускающими стерильные изделия
однократного применения.
Стерилизующий агент – ионизирующие γ и β излучения.
Упаковки: помимо бумажных используют пакеты из
полиэтилена.
Достоинства: надолго сохраняется стерильность в упаковке.
Недостатки: дороговизна метода.

Эффективный стерилизатор позволяющий стерилизовать хирургические
инструменты и перевязочные материалы сухим теплом и
ультрафиолетовыми лучами. Имеет мощное бактерицидное действие.
Рециркулятор предназначен для обеззараживания воздуха помещений в
присутствии и отсутствии людей в процессе принудительной циркуляции
воздушного потока через корпус, внутри которого размещены две бактерицидные
лампы низкого давления.

Кварцевая лампа.

Стерилизация инфракрасными лучами

Малогабаритный стерилизатор предназначен для стерилизации
стоматологических и микрохирургических инструментов из металлов в
условиях госпиталей, поликлиник, больниц и других лечебных и
косметологических учреждений. Стерилизация осуществляется
инфракрасным мощным кратковременным тепловым воздействием.
t 200+3°С. Полный цикл стерилизации инструментов в неупакованном
виде занимает в инфракрасном стерилизаторе от 10 до 25 мин (в
зависимости от инструментов), включая этапы выхода на режим и
охлаждение, после чего инструменты могут использоваться по
назначению.
Конструкция этих стерилизаторов
позволяет целиком размещать в
стерилизационной камере и
стерилизовать и затем оставлять
для охлаждения даже
стоматологические щипцы.

Кроме того, стерилизатор может выполнять функции
очень экономичного и быстрого подогревателя
лекарств, воды и т.д. до заданной температуры при
минимальных затратах времени и электрической
энергии. Вместе с тем он может сохранять температуру
в режиме термоса и поддерживать ее в режиме
автоклава.
Недостатки: отсутствие
возможности стерилизовать
инструменты упакованными, а
также общий недостаток
термических методов ограниченную приемлемость из-за
повреждающего действия на
полимерные материалы
(пластмассы, резины и т.д.)
Инфракрасный стерилизатор ИКС-1

Плазменные стерилизаторы

Это самый современный метод стерилизации, известный на сегодняшний
день. Он позволяет стерилизовать любые медицинские изделия, от полых
инструментов до кабелей, электроприборов, к которым в ряде случаев
вообще не удается применить ни один из известных методов
стерилизации.
Минимальное время обработки в плазменном стерилизаторе – от 35
минут, рабочая температура – 36-60°С. Одно из основных преимуществ
этого метода – отсутствие токсичных отходов, образуются только
кислород и водный пар. Плазменная стерилизация
уничтожает все формы и виды микроорганизмов.
Плазменные стерилизаторы – перспективное
оборудование, но для большинства российских
медицинских учреждений слишком дорогостоящее.

Процесс плазменной стерилизации

Перед стерилизацией предметы заворачивают и
кладут в камеру на стеллажи, при этом с помощью
механического вакуумного насоса снижается
давление. Плазма образуется в сильном
электрическом поле (импульсный постоянный ток).
Сразу после этого определенное количество
стерилизующего пара впрыскивается в камеру
стерилизатора и равномерно распространяется,
заполняя все внутренние полости. В камере
расположен стеллаж (для размещения
стерилизуемых предметов), который также служит в
качестве электрода в процессе образования плазмы. Этот стеллаж соединен
электрической цепью с источником энергии, который
генерирует импульсы и вызывает возбуждение плазмы. Комбинированного действия
вакуума и стерилизующей смеси на предметы, помещенные в камеру, достаточно для
достижения желаемого уровня стерилизации. Во время этапа очистки
профильтрованный атмосферный воздух впрыскивается в камеру и быстро удаляется.
Этот процесс повторяется не менее 2 раз. Давление постоянно снижается с помощью
механического вакуумного насоса. Плазма начинает образовываться при давлении 0,1
мбар, поддержание вакуума продолжается до достижения условий стерилизации
(температура около 45°C_50°C), давление снижается до 5x10-2 мбар. Дверь можно
открыть после того, как профильтрованный атмосферный воздух снова поступает в
камеру. Нагревание плазмы (до 45°C), достигаемое с помощью УФ-облучения, усиливает
действие химического раствора, что гарантирует отсутствие токсических отходов на
простерилизованных предметах. Возбуждение плазмы - это несложный процесс,
который мало зависит от типа стерилизуемого материала (метал, керамическое стекло
или пластмасса).

Конструкция современных
плазменных стерилизаторов
Панель управления
Аудиовизуальные
сигналы тревоги (включая
историю сигналов)
Программа
обслуживания для
профилактического ухода
Управление уровнем
доступа операторов
Калибровка и
технические страницы
(защищено паролем)
Программирование
новых циклов или
модификация стандартного
цикла (защищено паролем)
Понятные тексты
сообщений
Открывание/закрывание
двери
Ручное управление
Страницы с советами по
устранению
неисправностей
Функция интерфейса
операторов
Сенсорная панель
Управление сенсорной панелью позволяет
отслеживать нижеперечисленные операции
мониторинга.
Фаза
Значение давления
Значение температуры
Время
Выбранный цикл
Дата и время
Переход на другие страницы управления и
мониторинга
Выбор ручного действия
Наблюдение за заданным значением
Так же существуют сенсорные панели с
поддержкой нескольких языков: английский,
итальянский, французский, испанский,
арабский, русский, португальский, немецкий,
турецкий, польский, китайский, греческий,
румынский, корейский, болгарский и др.

Сигналы тревоги
Сигнал тревоги картриджа
Сигнал закрытия двери
Максимальное время фазы
Сигнал вакуума и давления
Отключение электроснабжения
Сигнал дефицита воздуха
Уменьшение заряда внутренней
_ батареи
Низкий/высокий температурный
диапазон
Сетевые системы и программное
обеспечение
Плазменный стерилизатор можно подключить к
компьютеризированной управляющей системе и/или
системе управления стерилизаторами.
NCS: система центрального мониторинга данных,
архивации и сообщений при помощи интерфейса
данных в режиме реального времени.
ITINERIS: система управления Отделения службы
централизованной стерилизации и система слежения
за инструментами.
RMS: система удаленного обслуживания для внешней
проверки обслуживания и интерфейс.
Автоматические скользящие двери
Функция автоматического скольжения с помощью
пневматической системы позволяет безопасно и
плавно отрывать/закрывать дверь. В дверях имеется
окошко для наблюдения за процессом и загрузкой

Методы контроля эффективности стерилизации

В комплексе мероприятий по стерилизации изделий медицинского
назначения важное значение имеет организация и проведение контроля
за ее эффективностью. Используемые до настоящего времени методы и
средства контроля не всегда позволяют выявить дефекты стерилизации,
что влечет за собой повышение уровня внутрибольничных инфекций.
Физический методы;
Химический методы;
Биологический методы.

Физические методы:

Физические методы контроля осуществляются с помощью средств
измерения температуры (термометры, термопары), давления
(манометры, мановакуумметры) и времени (таймеры). Современные
стерилизаторы оснащены также записывающими устройствами,
фиксирующими отдельные параметры каждого цикла стерилизации.
Мановакуумметр
Термометр и манометр

Химические методы:

осуществляется с помощью химических тестов и термохимических
индикаторов, изменяющих свое агрегатное состояние и цвет при
достижении определенного для него плавления:
для паровых стерилизаторов используется
мочевина (карбамид) с розовым красителем температура
плавления 132 градуса Цельсия
бензойная кислота с фуксином - температура плавления 120°С;
термоиндикаторная бумага, изменяющая свой цвет под
воздействием определенной температуры (l20°C-132 С);
для воздушных стерилизаторов:
тиомочевина (тиокарбамид) без красителя, температура
плавления 180°С;
янтарная кислота, температура плавления которой 180°С
термоиндикаторная бумага изменяет свой цвет при температуре
180°С.

С января 2002 года в России введен в действие ГОСТ Р ИСО 11140-1 "Стерилизация медицинской продукции. Химические индикаторы. Общие требования". С

С января 2002 года в России введен в действие ГОСТ Р ИСО 11140-1
"Стерилизация медицинской продукции. Химические индикаторы. Общие
требования". Согласно этому документу химические индикаторы распределены
на шесть классов.
1-го класса являются индикаторами ("свидетелями") процесса. Примером такого индикатора
является термоиндикаторная лента, наклеиваемая перед проведением стерилизации на
текстильные упаковки или стерилизационные коробки. Изменение цвета ленты указывает, что
упаковка подверглась воздействию процесса стерилизации. Такие же индикаторы могут
помещаться в наборы хирургических инструментов или операционного белья.
2-й класс индикаторов предназначен для использования в специальных тестовых процедурах,
например, при проведении теста Бовье-Дика (Bowie-Dick test). Этот тест не контролирует
параметры стерилизации, он оценивает эффективность удаления воздуха из камеры парового
стерилизатора.
Индикаторы 3-го класса являются индикаторами одного параметра. Они оценивают
максимальную температуру, но не дают представления о времени ее воздействия. Примерами
такого рода индикаторов являются описанные выше химические вещества.
4-й класс - это многопараметровые индикаторы. Они содержат красители, изменяющие свой цвет
при сочетанном воздействии нескольких параметров стерилизации, чаще всего - температуры и
времени. Примером таких индикаторов служат термовременные индикаторы для контроля
воздушной стерилизации.
5-й класс - интегрирующие индикаторы. Эти индикаторы реагируют на все критические
параметры метода стерилизации. Характеристика этого класса индикаторов сравнивается с
инактивацией высокорезистентных микроорганизмов.
6-й класс - индикаторы-эмуляторы. Эти индикаторы должны реагировать на все контрольные
значения критических параметров метода стерилизации.

Индикаторы
1 класс
4 класс
2 класс
3 класс
6 класс
5 класс

Биологический метод

В настоящее время для проведения бактериологического контроля
используются биотесты, имеющие дозированное количество спор тесткультуры. Контроль эффективности стерилизации с помощью биотестов
рекомендуется проводить 1 раз в 2 недели. В зарубежной практике
принято применять биологическое тестирование не реже 1 раза в
неделю.
В ряде случаев возникает необходимость проведения контроля с
помощью биотестов каждой загрузки стерилизатора. Прежде всего, речь
идет о стерилизации инструментов, используемых для выполнения
сложных оперативных вмешательств, требующих применения
высоконадежных стерильных материалов. Каждая загрузка
имплантируемых изделий также должна подвергаться
бактериологическому контролю. При этом использование
простерилизованных материалов задерживается до получения
отрицательных результатов контроля. Тех же принципов при
определении периодичности контроля рекомендуется придерживаться в
отношении газовой стерилизации, являющейся по сравнению с другими
методами более сложной.

Биологические индикаторы.

Они представляют собой пластиковый контейнер с
крышечкой, содержащий хрупкую ампулу с
восстанавливающей средой и бумажную полоску,
зараженную спорами контрольных
микроорганизмов. Индикатор размещается
непосредственно в стерилизационной камере, либо
закладывается в контейнеры и упаковки,
предназначенные к стерилизации, в процессе их
подготовки. Никаких предварительных
манипуляций с индикатором производить не
требуется - он полностью готов к применению.
После окончания стерилизационного цикла
индикатор должен быть извлечен и подвергнут
инкубации для контроля инактивации
содержащихся в нем спор микроорганизмов. После
извлечения из камеры стерилизатора надо
раздавить находящуюся внутри ампулу и
инкубировать при рекомендованной температуре в
течение необходимого времени - обычно это 24
часа. Ошибка стерилизации проявляется
изменением цвета и/или помутнением среды.

Cлайд 1

Виды и способы стерилизации медицинских инструментов и материалов Казахстанско – Российский медицинский университет Кафедра ВК – II Курс пропедевтики внутренних болезней и сестринского дела Ф.И.О. студента Редькина Мария Факультет Общая медицина Курс 2 Группа 206 А Проверила Аманжолова Т.К. Алматы 2010г.

Cлайд 2

План: Введение Этапы стерилизации 1 этап - дезинфекция 2 этап – предстерилизационная обработка: Фенолфталеиновая проба Азопирамовая проба 3 этап - стерилизация Методы стерилизации Профилактическая дезинфекция и стерилизация различных объектов терапевтического отделения. Заключение Литература

Cлайд 3

Введение: …Необходимо строго соблюдать правила использования дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации медицинского инструментария, оборудования, при проведении манипуляций, связанных с нарушением целостности кожных покровов соблюдать ОСТ 42-21-2-85. В поликлинике централизованное стерилизационное отделение, где работают два медицинских работника в две смены. Они отвечают за отработку медицинского инструмента, а также перевязочный материал… («Приказ № 408 «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране» от 12.07.89 г.»)

Cлайд 4

Методы стерилизации Стерилизация медицинского инструмента осуществляется воздушным, химическим, паровым методом.

Cлайд 5

Этапы стерилизации 1 этап - дезинфекция После использования медицинский инструментарий и перчатки погружают в емкость с дезинфицирующим средством в 3%-ном растворе хлорамина на 1 ч, затем промывают под проточной водой до исчезновения запаха хлора, дезинфекция кипячением металлических инструментов, стекла.

Cлайд 6

2 этап - предстерилизационная обработка Инструмент и перчатки замачивают в моющем растворе (33%-ный раствор перекиси водорода - 14 г, моющее средство - «Лотос» - 5 г, дистиллированная вода - 981 г) на 15 мин при температуре 50°С. каждое изделие моется 20 с, а затем в течение 10 мин промывается под проточной водой. После предстерилизационной обработки проводятся контрольные пробы - на отмывку от щелочи (фенолфталеиновая) и на скрытую кровь - азопирамовая. Предстерилизационная обработка

Cлайд 7

Фенолфталеиновая проба Проверяется 1% из партии, но не менее 3-5 изделий каждого наименования. Методика пробы. Ватой, смоченной в 1%-ном растворе фенолфталеина, протирают рабочие поверхности, места соединения. Проба считается положительной (некачественная промывка), если появляется розовое окрашивание. В данном случае вся партия подвергается повторной промывке.

Cлайд 8

Азопирамовая проба Предварительно готовят раствор, состоящий из азопирама и 3%-ного раствора перекиси водорода в равных количествах. Приготовленный раствор испытывают на пригодность ватой с кровью. Появление фиолетового окрашивания, быстро переходящего в розово-сиреневый цвет, говорит о пригодности препарата. Рабочий раствор можно использовать не более 2 ч. Чистый раствор азопирама хранится в холодильнике сроком до 2 месяцев. При проведении азопирамовой пробы результат трактуется следующим образом: при появлении фиолетового окрашивания вся партия инструментов обрабатывается повторно - была произведена некачественная предстерилизационная очистка.

Cлайд 9

Правила предстерилизационной обработки Медицинских изделий 1.По завершению дезинфекции медицинские инструментарии ополаскиваются проточной водой. Время выдержки 0,5 мин Затем: замачиваются при полном погружении в один из растворов моющего средства разрешенных уполномоченным органом в области санитарно-эпидемиологического благополучия населения. Первоначальная температура раствора 20-25, время выдержки 15 мин.

Cлайд 10

2.Мытьё каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона. Время выдержки 0,5 мин. 3.Ополаскивание проточной водой. Время выдержки 10 мин. 4.Ополаскивание дистиллированной водой. Время выдержки 0,5 мин 5.Сушка горячим воздухом в сушильном шкафу. Первоначальная температура раствора 85. До полного исчезновения влаги.

Cлайд 11

3 этап - стерилизация Для стерилизации инструмент укладывается на решетки, и для контроля качества стерилизации закладывается температурно-временной индикатор - винар-лента. Открытым методом стерилизуется в воздушном стерилизаторе в течение 1 ч при температуре 180°С. В журнале отмечается время начала и окончания стерилизации, а также подклеивается температурно-временной индикатор, который после стерилизации изменяет свой цвет. Перевязочный материал, вату, белье стерилизуют в биксах или двухслойных мешках методом автоклавирования при температуре 120°C при давлении 1,1 атм. в течение 45 мин. На биксах ставится дата и часы стерилизации.

Cлайд 12

Профилактическая дезинфекция и стерилизация различных объектов терапевтического отделения. Термометры ртутные, медицинские -2% р-ра хлорамина- 15 минут. При полном погружении, затем промыть водой, хранить в сухом виде. Шпатель металлический -Кипячение в дистиллированной воде -30 минут или обработка сухим воздухом при температуре 120 градусов С – 45 минут. -Обработка сухим воздухом при температуре t=180 градусов С- 60 минут. Кушетки -Кушетка полностью покрыта клеенкой. 1% р-ра хлорамина, двукратное протирание или 3% р-ра хлорамина, двукратное протирание, если загрязнена кровью и ее компонентами или другими биологическими жидкостями. Ножницы -Кипячение в дистиллированной воде – 30 минут или в 2% содовом растворе -15 минут. При полном погружении. Мочалки для мытья пациентов. -Кипячение в дистиллированной воде- 30 минут.

Cлайд 13

Стерилизация паровым методом Стерилизующим агентом является водяной насыщенный пар под избыточным давлением стерилизацию производят в паровых стерилизаторах в течение 20-22 мин при давлении пара в стерилизационной камере 2 ± 0,2 кгс/см2 (0,2 ± 0,02 МПа) и температуре 132 ± 2°. Паровым методом стерилизуют изделия из текстильных материалов, стекла, коррозионно-устойчивого металла, резины Для достижения необходимого прогрева необходимо полное удаление воздуха из стерилизационной камеры и стерилизуемых объектов

Cлайд 14

Стерилизация воздушным методом Осуществляется сухим горячим воздухом в воздушных стерилизаторах при температуре 180° в течение 60-65 мин или при температуре 160° в течение 150 мин. Стерилизуют изделия из металла, стекла и силиконовой резины, а также разрушающиеся под действием влаги. Их укладывают в пакеты из крафт-бумаги. Воздушный метод нельзя применять при стерилизации термолабильных материалов

Cлайд 15

Химические методы Выполняются в закрытых емкостях, покрытых неповрежденной эмалью, а также сделанных из стекла или пластмассы. Стерилизуемые объекты погружают в раствор при температуре 18 ± 2°. Время стерилизационной выдержки в 6% растворе перекиси водорода - 60 ± 5 мин, дезоксоне-1 - 45-50 мин. После стерилизации изделия промывают стерильной водой в асептических условиях.

Cлайд 16

Стерильный стол накрывается 2 раза в день. Растворы дезинфекции инструментов и перчаток также меняются 2 раза в день. Дезинфицирующие средства готовятся централизованно в отдельном помещении. Для работы применяют 3%-ный раствор хлорамина для обработки инструмента, перчаток, ветоши; 1%-ный раствор хлорамина для обработки поверхностей, термометров, мытья полов, кушеток; 0,5%-ный раствор хлорамина для обработки рук.

Cлайд 17

Индивидуальные мочалка и мыло. Ванна -Дезинфекция 3%р-ом хлорной извести, двукратное протирание (или1 % р-р хлорамина, экспозиции 60 минут или другой рнегламентированный раствор. -Натирать ветошью с моющее-дезинфецирующим или чистящее- дезинфицирующим средством из расчета 1-2 г на 100кв.см,экспозиции 5 минут, затем ополоснуть в проточной воде. Резиновые коврики в душевой комнате. -5% р-ра хлорамина с 5 грамами моющего средства в 1 литре раствора. -Полное погружение на30 минут или натереть, но не смывать до полного высыхания. Обувь -25 % р-ра формалина или 40% р-ра уксусной кислоты, уложить в полиэтиленовый пакет на три часа, проветрить до исчезновения запаха. Судно, мочеприемник -3% осветленный р-р хлорной извести- 1ч. -полное погружение,последующее ополаскивание, хранение в сухом месте. -Присушить

Cлайд 18

Грелки,пузырьки для льда, резиновые кружки. -Двукратное протирание 1%р-ом хлорамина. -Промыть горячей водой с мылом, ополоснуть, высушить хронить в сухом месте. Наконечники клизменные, катеторы. -3% раствора хлорамина- 60 минут. -0.5 % моющий растворе при температуре 46 градусов С – 15 минут, или кипячении в 2% содовом р-ре -15 минут, с последующей мойкой. -Автоклавирование. Мензурки. -1% р-р хлорамина- 60 минут, ополаскивание или кипячение – 30 минут. Перчатки - 3% р-р хлорамина -60 минут или другой регламентированный дезраствор, полное погружение. -0.5% моющий раствор- 15 минут - Автоклавировиние, щядящий режим. Пипетки глазные. -Кипячение в дистиллированной воде- 30 минут, стерилизация в щядящем режиме автоклава в разобранном виде.